[发明专利]一种黄酮醇类化合物八角莲酮A-F的制备方法及其应用在审
申请号: | 202310045919.1 | 申请日: | 2023-01-30 |
公开(公告)号: | CN116041408A | 公开(公告)日: | 2023-05-02 |
发明(设计)人: | 孙彦君;冯卫生;王俊敏;弓建红;李孟;韩瑞杰;赵琪璐;陈辉;关延彬 | 申请(专利权)人: | 河南中医药大学 |
主分类号: | C07H17/07 | 分类号: | C07H17/07;A23L2/44;A23L3/3544;C07H15/26;C07H1/08;C07D311/30;C07D311/40 |
代理公司: | 郑州天阳专利事务所(普通合伙) 41113 | 代理人: | 聂孟民 |
地址: | 450046 河南*** | 国省代码: | 河南;41 |
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摘要: | |||
搜索关键词: | 一种 黄酮 化合物 八角 制备 方法 及其 应用 | ||
1.一种黄酮醇类化合物八角莲酮A-F,是从八角莲中提取的八角莲酮A(dysosmaflavonoid A)、八角莲酮B(dysosmaflavonoid B)、八角莲酮C(dysosmaflavonoidC)、八角莲酮D(dysosmaflavonoid D)、八角莲酮E(dysosmaflavonoid E)、八角莲酮F(dysosmaflavonoid F),分子结构式分别为:
2.权利要求1所述的黄酮醇类化合物八角莲酮A-F的制备方法,其特征在于,包括以下步骤:以八角莲药材20-40kg为原料,每次加入3–5倍原料重量体积、体积浓度为95%的乙醇加热回流提取3次,重量体积是指固体以kg计,液体以L计,提取温度为92–95℃,每次提取时间为1–1.5小时,减压回收95%乙醇,得浸膏状95%乙醇提取物;药渣再加入3–5倍原料重量体积、体积浓度为50%的乙醇加热回流提取1次,提取温度为92–95℃,提取时间为1–1.5小时,减压回收50%乙醇,得浸膏状50%乙醇提取物;合并95%乙醇提取物和50%乙醇提取物,加入体积为提取物重量2倍量的无水乙醇溶解,再加入重量为提取物2倍量的硅藻土吸附,回收溶剂后,依次加入体积为提取物3倍量的二氯甲烷、乙酸乙酯、甲醇洗脱,回收溶剂,分别得二氯甲烷洗脱部位、乙酸乙酯洗脱部位、甲醇洗脱部位;将甲醇洗脱部位经硅胶柱色谱分离,依次用体积比为100:0、100:1、100:3、100:5、100:7、100:10、100:30、100:50、0:100的二氯甲烷-甲醇混合溶剂系统进行梯度洗脱,每一梯度用30L–60L洗脱液,流速为50–70mL/min,每5L–10L为一流份,收集54个流份,各个流份经硅胶薄层色谱检测分析,用GF254薄层板,分别以体积比4:5的石油醚-丙酮和体积比5:2的二氯甲烷-甲醇作为展开剂,以体积比10:90的硫酸-乙醇溶液作为显色剂,105℃加热3–5min,根据薄层色谱检测结果,分别合并流份1–12、流份13–24、流份25–30、流份31–36、流份37–38、流份39–42、流份43–44、流份45–48、流份49–54,得到组份Fr.M1、组份Fr.M2、组份Fr.M3、组份Fr.M4、组份Fr.M5、组份Fr.M6、组份Fr.M7、组份Fr.M8、组份Fr.M9;
组分Fr.M4经sephadex LH-20凝胶柱色谱分离,以5.0L–10L甲醇洗脱,流速为5–10mL/min,每100mL–200mL为一流份,收集50个流份,各个流份经硅胶薄层色谱检测分析,分别合并流份1–25、流份26–44、流份45–50,得到亚组份Fr.M4–1、亚组份Fr.M4–2、亚组分Fr.M4–3;亚组分Fr.M4–1经ODS柱色谱分离,以体积比10:90、30:70、50:50、70:30、90:10、100:0的MeOH–H2O混合溶剂系统梯度洗脱,每一梯度为2.5L–5L,每一梯度为一亚组分,共得到亚组份Fr.M4–1–1、亚组份Fr.M4–1–2、亚组份Fr.M4–1–3、亚组份Fr.M4–1–4、亚组份Fr.M4–1–5、亚组份Fr.M4–1–6;亚组份Fr.M4–1–2经sephadex LH-20凝胶柱色谱分离,以500–1000mL甲醇洗脱,流速为2.5–5mL/min,每5mL–10mL为一流份,收集100个流份,各个流份经硅胶薄层色谱检测分析,分别合并流份1–17、流份18–41、流份42–59、流份60–77、流份78–92、流份93–100,收集得到亚组份Fr.M4–1–2–1、亚组份Fr.M4–1–2–2、亚组份Fr.M4–1–2–3、亚组份Fr.M4–1–2–4、亚组份Fr.M4–1–2–5、亚组份Fr.M4–1–2–6;亚组分M4–1–2–3经制备型高效液相色谱纯化,以体积比为52:48的甲醇-水混合溶剂洗脱,色谱柱为YMC-Pack ODS-A,流速为3mL/min,分别收集保留时间为7.9min、8.3min、10.8min、12.8min、16.4min、25.1min的色谱峰,得到亚组份Fr.M4–1–2–3–1、亚组份Fr.M4–1–2–3–2、亚组份Fr.M4–1–2–3–3、亚组份Fr.M4–1–2–3–4、亚组份Fr.M4–1–2–3–5、亚组分Fr.M4–1–2–3–6;亚组份Fr.M4–1–2–3–3经制备型高效液相色谱纯化,以体积比为27:73的乙腈-水混合溶剂洗脱,色谱柱为YMC-PackODS-A,流速为3mL/min,分别收集保留时间为17.5min的色谱峰,得到八角莲酮E;
亚组份Fr.M4–1–2–3–4经制备型高效液相色谱纯化,以体积比为27:73的乙腈-水混合溶剂洗脱,色谱柱为YMC-Pack ODS-A,流速为3mL/min,收集保留时间为30.7min的色谱峰,得到八角莲酮F;
组份Fr.M5经sephadex LH-20柱色谱分离,2.5L–5L甲醇洗脱,流速为5–10mL/min,每100mL–200mL为一流份,收集25个流份,各个流份经硅胶薄层色谱检测分析,分别合并流份1–3、流份4–5、流份6–7、流份8–10、流份11–13、流份14–17、流份19–21、流份22–25,得到亚组份Fr.M5–1、亚组份Fr.M5–2、亚组份Fr.M5–3、亚组份Fr.M5–4、亚组份Fr.M5–5、亚组份Fr.M5–6、亚组份Fr.M5–7、亚组分Fr.M5–8;亚组份Fr.M5–1~Fr.M5–5合并,经MCI柱色谱分离,经体积比0:100、10:90、30:70、50:50、70:30、90:10、100:0的MeOH–H2O混合溶剂系统梯度洗脱,每一梯度洗脱溶剂为1.0L–2.0L,流速为2.5–5.0mL/min,每250mL–500mL为一流份,收集28个流份,各个流份经硅胶薄层色谱检测分析,分别合并流份1–5、流份6–15、流份16–23、流份17–28,得到亚组分Fr.M5–1–1、亚组分Fr.M5–1–2、亚组分Fr.M5–1–3、亚组分Fr.M5–1–4;亚组分Fr.M5–1–3经硅胶柱色谱分离,以体积比100:0、100:1、100:3、100:5、100:7、100:10、7:1、3:1的CHCl3-MeOH混合溶剂系统梯度洗脱,每一梯度洗脱溶剂为50mL–100mL,流速为2.0–5.0mL/min,每5mL–10mL为一流份,收集80个流份,各个流份经硅胶薄层色谱检测分析,分别合并流份1–10、流份11–20、流份21–30、流份31–40、流份41–46、流份47–51、流份52–60、流份61–70、流份71–80,得到亚组份Fr.M5–1–3–1、亚组份Fr.M5–1–3–2、亚组份Fr.M5–1–3–3、亚组份Fr.M5–1–3–4、亚组份Fr.M5–1–3–5、亚组份Fr.M5–1–3–6、亚组份Fr.M5–1–3–7、亚组份Fr.M5–1–3–8、亚组分Fr.M5–1–3–9;亚组分Fr.M5–1–3–5经制备型高效液相色谱纯化,以体积比为55:45的甲醇-水混合溶剂洗脱,色谱柱为YMC-Pack ODS-A,流速为3mL/min,收集保留时间为34.9min的色谱峰,得到八角莲酮A;
组分Fr.M6经sephadex LH-20柱色谱分离,15L–30L甲醇洗脱,流速为5–10mL/min,每0.5L–1L为一流份,收集30个流份,各个流份经硅胶薄层色谱检测分析,分别合并流份1–18、流份19–30,得到亚组份Fr.M6–1和Fr.M6–2;亚组份Fr.M6–1经ODS柱色谱分离,以体积比为10:90、30:70、50:50、70:30、90:10、100:0的MeOH-H2O混合溶剂系统梯度洗脱,每一梯度洗脱溶剂为2.5L–5L,流速为3.0–6.0mL/min,每0.5L–1L为一流份,收集30个流份,各个流份经硅胶薄层色谱检测分析,分别合并流份1–5、流份6–10、流份11–20、流份21–30,得到亚组分Fr.M6–1–1、亚组分Fr.M6–1–2、亚组分Fr.M6–1–3、亚组分M6–1–4;亚组分Fr.M6–1–3经硅胶柱色谱分离,以体积比100:0、100:1、100:3、100:5、100:7、100:10、100:30的二氯甲烷-甲醇混合溶剂系统梯度洗脱,每一梯度洗脱溶剂为125L–250L,流速为1.0–2.0mL/min,每一洗脱梯度为一流份,得到亚组分Fr.M6–1–3–1、亚组分Fr.M6–1–3–2、亚组分Fr.M6–1–3–3、亚组分Fr.M6–1–3–4、亚组分Fr.M6–1–3–5、亚组分Fr.M6–1–3–6、亚组分Fr.M6–1–3–7;亚组份Fr.M6–1–3–4经sephadex LH-20凝胶柱色谱分离,125mL–250mL甲醇洗脱,流速为1–2mL/min,每5mL–10mL为一流份,收集25个流份,各个流份经硅胶薄层色谱检测分析,分别合并流份1–7、流份8–16、流份17–25,得到亚组分Fr.M6–1–3–4–1、亚组分Fr.M6–1–3–4–2、亚组分Fr.M6–1–3–4–3;亚组分Fr.M6–1–3–4–2经制备型高效液相色谱纯化,以体积比为50:50的甲醇-水混合溶剂洗脱,色谱柱为YMC-Pack ODS-A,流速为3mL/min,分别收集保留时间为33.1min、41.5min、45.0min的色谱峰,得到亚组分Fr.M6–1–3–4–2–1、亚组分Fr.M6–1–3–4–2–2、亚组分Fr.M6–1–3–4–2–3;亚组分Fr.M6–1–3–4–2–1经制备型高效液相色谱纯化,以体积比为35:65的乙腈-水混合溶剂洗脱,色谱柱为YMC-Pack ODS-A,流速为3mL/min,收集保留时间为11.9min的色谱峰,得到化合物八角莲酮C;
亚组分Fr.M6–1–3–4–2–2经制备型高效液相色谱纯化,以体积比为30:70的乙腈-水混合溶剂洗脱,色谱柱为YMC-Pack ODS-A,流速为3mL/min,收集保留时间为15.6min的色谱峰,得到化合物八角莲酮D;
亚组分Fr.M6–1–3–4–2–3经制备型高效液相色谱纯化,以体积比为30:70的乙腈-水混合溶剂洗脱,色谱柱为YMC-Pack ODS-A,流速为3mL/min,收集保留时间为28.5min的色谱峰,得到化合物八角莲酮B。
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