[发明专利]一种pBiflu荧光标签表达载体的制备方法及其应用在审
| 申请号: | 202210557822.4 | 申请日: | 2022-05-21 |
| 公开(公告)号: | CN115322997A | 公开(公告)日: | 2022-11-11 |
| 发明(设计)人: | 刘田田;李涛 | 申请(专利权)人: | 河南中医药大学 |
| 主分类号: | C12N15/66 | 分类号: | C12N15/66;C12N15/65;C12N15/82;C12Q1/6897 |
| 代理公司: | 西安汇恩知识产权代理事务所(普通合伙) 61244 | 代理人: | 毕波 |
| 地址: | 450046 河南*** | 国省代码: | 河南;41 |
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| 摘要: | |||
| 搜索关键词: | 一种 pbiflu 荧光 标签 表达 载体 制备 方法 及其 应用 | ||
1.一种pBiflu荧光标签表达载体的制备方法,其特征在于,该方法为:
S1、在温度为37℃的条件下,用KpnI/XhoI双酶切pGL3 Basic载体6h,1%琼脂糖凝胶分离,回收4.8Kb大小的条带,得到KpnI/XhoI双酶切pGL3 Basic载体的回收产物;
S2、以pRGEB32Bar-Cas9质粒为模板,用特异性引物F1和特异性引物R1进行PCR反应克隆2×35S启动子,将PCR扩增产物用1%琼脂糖凝胶分离,用DNA凝胶回收试剂盒回收864bp大小的PCR产物,得到2×35S启动子PCR回收产物;
所述PCR反应的体系为:2×KOD Mix 10μL,特异性引物F1 1μL、特异性引物R1 1μL、pRGEB32Bar-Cas9质粒1μL、灭菌超纯水补至20μL;
所述PCR反应的程序为:98℃预变性10min;98℃变性10s,55℃退火5s,68℃延伸10s,扩增40个循环;68℃延伸10min;
所述特异性引物F1的核苷酸序列如SEQ ID NO:1所示;
所述特异性引物R1核苷酸序列如SEQ ID NO:2所示;
S3、利用同源重组方法将S2中得到的2×35S启动子PCR回收产物连接至S1中得到的KpnI/XhoI双酶切pGL3 Basic载体的KpnI/XhoI位点之间,在温度为50℃的条件下连接反应25min,得到pGL-35S连接产物,将所述pGL-35S连接产物转化到大肠杆菌中,扩增繁殖,用质粒提取试剂盒提取后,得到中间载体pGL-35S;
S4、在温度为37℃的条件下,将S3中得到的中间载体pGL-35S用XhoI/SalI双酶切6h后,将酶切产物用1%琼脂糖凝胶分离,用DNA凝胶回收试剂盒回收3.67Kb大小的条带,得到XhoI/SalI双酶切中间载体pGL-35S的回收产物;
S5、人工合成多克隆位点MCS正向引物和多克隆位点MCS反向引物,将所述多克隆位点MCS正向引物和所述多克隆位点MCS反向引物在95℃的条件下退火5min,得到MCS退火引物;
所述多克隆位点MCS正向引物的核苷酸序列如SEQ ID NO:3所示;
所述多克隆位点MCS反向引物的核苷酸序列如SEQ ID NO:4所示;
S6、将S5中得到的MCS退火引物T4连接至S4中得到的XhoI/SalI双酶切中间载体pGL-35S的回收产物的XhoI/SalI位点之间,在温度为22℃的条件下连接反应1h,得到pGL-35S-MCS连接产物;将所述pGL-35S-MCS连接产物转化到大肠杆菌中,扩增繁殖,用质粒提取试剂盒提取后,得到中间载体pGL-35S-MCS;
S7、克隆Nos Ter序列:以pCambia1302质粒为模板,以特异性引物F2和特异性引物R2为引物进行PCR反应克隆Nos Ter序列,将PCR扩增产物用1.5%琼脂糖凝胶分离,用DNA凝胶回收试剂盒回收251bp大小的PCR产物,得到Nos Ter序列PCR回收产物;
所述PCR反应的体系为:2×KOD Mix 10μL,特异性引物F2 1μL、特异性引物R2 1μL、pCambia1302质粒1μL、灭菌超纯水补至20μL;
所述PCR反应的程序为:98℃预变性10min;98℃变性10s,55℃退火5s,68℃延伸10s,扩增40个循环;68℃延伸10min;
所述特异性引物F2的核苷酸序列如SEQ ID NO:5所示;
所述特异性引物R2核苷酸序列如SEQ ID NO:6所示;
S8、将S6中得到的中间载体pGL-35S-MCS用EcoRI/SalI双酶切,在温度为37℃的条件下酶切反应6h后,将酶切产物用1%琼脂糖凝胶分离后,用DNA凝胶回收试剂盒回收3.72Kb大小的产物,得到EcoRI/SalI双酶切中间载体pGL-35S-MCS的回收产物;
S9、利用同源重组方法将S7中得到的Nos Ter序列PCR回收产物中的Nos Ter序列连接至S8中得到EcoRI/SalI双酶切中间载体pGL-35S-MCS的EcoRI/SalI位点之间,在温度为50℃的条件下连接反应25min,得到pGL-35S-MCS-Nos连接产物,将所述pGL-35S-MCS-Nos连接产物转化到大肠杆菌中,扩增繁殖,用质粒提取试剂盒提取后,得到中间载体pGL-35S-MCS-Nos;
S10、将S9中得到的中间载体pGL-35S-MCS-Nos用EcoRI/BamHI双酶切,温度为37℃的条件下酶切反应6h后,将酶切产物用1%琼脂糖凝胶分离后,用DNA凝胶回收试剂盒回收3.97Kb大小的产物,得到EcoRI/BamHI双酶切中间载体pGL-35S-MCS-Nos的回收产物;
S11、克隆mCherry序列:以pmR-mCherry质粒为模板,以特异性引物F3和特异性引物R3为引物进行PCR反应克隆mCherry序列,将PCR扩增产物用1.5%琼脂糖凝胶分离,用DNA凝胶回收试剂盒回收711bp大小的PCR产物,得到mCherry序列的PCR回收产物;
所述PCR反应的体系为:2×KOD Master Mix 10μL,特异性引物F3 1μL、特异性引物R31μL、pmR-mCherry质粒1μL、灭菌超纯水补至20μL;
所述PCR反应的程序为:98℃预变性10min;98℃变性10s,55℃退火5s,68℃延伸20s,扩增40个循环;68℃延伸10min;
所述特异性引物F3的核苷酸序列如SEQ ID NO:7所示;
所述特异性引物R3核苷酸序列如SEQ ID NO:8所示;
S12、将S11中得到的mCherry序列的PCR回收产物的mCherry序列T4连接至S10中得到的EcoRI/BamHI双酶切中间载体pGL-35S-MCS-Nos的EcoRI/BamHI位点之间,在温度为22℃的条件下连接反应1h,得到pGL-35S-mCherry连接产物;将所述pGL-35S-mCherry连接产物转化到大肠杆菌中,扩增繁殖,用质粒提取试剂盒提取后,得到中间载体pGL-35S-mCherry;
S13、克隆2×35S启动子序列:以pRGEB32Bar-Cas9质粒为模板,以特异性引物F4和特异性引物R4为引物进行PCR反应克隆2×35S启动子序列,将PCR扩增产物用1.5%琼脂糖凝胶分离,用DNA凝胶回收试剂盒回收864bp大小的PCR产物,得到2×35S启动子序列PCR回收产物;
所述PCR反应的体系为:2×KOD Mix 10μL,特异性引物F4 1μL、特异性引物R4 1μL、pRGEB32Bar-Cas9质粒1μL、灭菌超纯水补至20μL;
所述PCR反应的程序为:98℃预变性10min;98℃变性10s,55℃退火5s,68℃延伸20s,扩增40个循环;68℃延伸10min;
所述特异性引物F4的核苷酸序列如SEQ ID NO:9所示;
所述特异性引物R4核苷酸序列如SEQ ID NO:10所示;
S14、将S12中得到的中间载体pGL-35S-mCherry用BamHI/BglII双酶切,温度为37℃的条件下酶切反应6h后,将酶切产物用1%琼脂糖凝胶分离后,切下4.67Kb大小的条带,用DNA凝胶回收试剂盒回收产物,得到BamHI/BglII双酶切中间载体pGL-35S-mCherry的回收产物;
S15、将S13中得到的2×35S启动子序列PCR回收产物的2×35S启动子序列T4连接至S14中得到的到BamHI/BglII双酶切中间载体pGL-35S-mCherry的回收产物的BamHI/BglII位点之间,在温度为22℃的条件下连接反应1h,得到pGL-35S-35S-mCherry连接产物;将所述pGL-35S-35S-mCherry连接产物转化到大肠杆菌中,扩增繁殖,用质粒提取试剂盒提取后,得到中间载体pGL-35S-35S-mCherry;
S16、克隆EYFP-Nos序列:以pYFPLT质粒为模板,以特异性引物F5和特异性引物R5为引物进行PCR反应克隆EYFP-Nos序列,将PCR扩增产物用1.5%琼脂糖凝胶分离,用DNA凝胶回收试剂盒回收965bp大小的PCR产物,得到EYFP-Nos序列PCR回收产物;
所述PCR反应的体系为:2×KOD Mix 10μL,特异性引物F5 1μL、特异性引物R5 1μL、pYFPLT质粒1μL、灭菌超纯水补至20μL;
所述PCR反应的程序为:98℃预变性10min;98℃变性10s,55℃退火5s,68℃延伸30s,扩增40个循环;68℃延伸10min;
所述特异性引物F5的核苷酸序列如SEQ ID NO:11所示;
所述特异性引物R5核苷酸序列如SEQ ID NO:12所示;
S17、将S15中得到的中间载体pGL-35S-35S-mCherry用HindIII/BglII双酶切,温度为37℃的条件下酶切反应6h后,将酶切产物用1%琼脂糖凝胶分离后,切下5.51Kb大小的条带,用DNA凝胶回收试剂盒回收产物,得到HindIII/BglII双酶切中间载体pGL-35S-35S-mCherry的回收产物;
S18、将S16中得到的EYFP-Nos序列PCR回收产物同源重组至S17中得到的HindIII/BglII双酶切中间载体pGL-35S-35S-mCherry的回收产物的HindIII/BglII位点之间,在温度为22℃的条件下连接反应1h,得到pBiflu荧光标签表达载体连接产物;将所述pBiflu荧光标签表达载体连接产物转化到大肠杆菌中,扩增繁殖,用质粒提取试剂盒提取后,得到pBiflu荧光标签表达载体,命名为pBiflu荧光标签表达载体;所述pBiflu荧光标签表达载体的核苷酸序列如SEQ ID NO:13所示。
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