[发明专利]一种HA标签融合表达载体的制备方法及其应用在审
申请号: | 202111457529.2 | 申请日: | 2021-12-02 |
公开(公告)号: | CN114134170A | 公开(公告)日: | 2022-03-04 |
发明(设计)人: | 李涛;徐玉芳;岳岩磊;李阳;张会勇;马培培;贾利华;姚文 | 申请(专利权)人: | 河南农业大学 |
主分类号: | C12N15/82 | 分类号: | C12N15/82;C12N15/67;C12N15/64;C12N15/62 |
代理公司: | 西安汇恩知识产权代理事务所(普通合伙) 61244 | 代理人: | 张伟花 |
地址: | 450002 河*** | 国省代码: | 河南;41 |
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摘要: | |||
搜索关键词: | 一种 ha 标签 融合 表达 载体 制备 方法 及其 应用 | ||
1.一种HA标签融合表达载体的制备方法,其特征在于,该方法为:
S1、用KpnI/XhoI双酶切pGL3 Basic载体,在温度为37℃的条件下反应6h后,将酶切产物用1%琼脂糖凝胶分离后,切下4.8Kb大小的条带,用DNA凝胶回收试剂盒回收产物,得到KpnI/XhoI双酶切pGL3 Basic载体的回收产物;
S2、以pRGEB32Bar-Cas9质粒为模板,以特异性引物F1和特异性引物R1为引物进行PCR反应克隆2×35S启动子,PCR扩增后,将PCR扩增产物用1%琼脂糖凝胶分离,切下677bp大小的条带,用DNA凝胶回收试剂盒回收PCR产物,得到2×35S启动子PCR回收产物;PCR反应体系为:2×Pfu Master Mix 10μL,特异性引物F11μL、特异性引物R11μL、pRGEB32Bar-Cas9质粒1μL、灭菌超纯水补至20μL;PCR扩增的反应条件为:98℃预变性10min;98℃变性10s,55℃退火10s,68℃延伸40s,扩增40个循环;68℃延伸10min;所述特异性引物F1的核苷酸序列如SEQ ID NO:1所示;所述特异性引物R1核苷酸序列如SEQ ID NO:2所示;
S3、利用同源重组方法将S2中得到的2×35S启动子PCR回收产物中的2×35S启动子连接至S1中得到的KpnI/XhoI双酶切pGL3 Basic载体的回收产物中pGL3 Basic载体的KpnI/XhoI位点之间,在温度为50℃的条件下连接反应25min,得到pGL-35S连接产物,将所述pGL-35S连接产物转化到大肠杆菌中,扩增繁殖,用质粒提取试剂盒提取后,得到中间载体pGL-35S;
S4、将S3中得到的中间载体pGL-35S用XhoI/SalI双酶切,在温度为37℃的条件下酶切反应6h后,将酶切产物用1%琼脂糖凝胶分离后,切下3.67Kb大小的条带,用DNA凝胶回收试剂盒回收产物,得到XhoI/SalI双酶切中间载体pGL-35S的回收产物;
S5、人工合成多克隆位点MCS正向引物和多克隆位点MCS反向引物,将所述多克隆位点MCS正向引物和所述多克隆位点MCS反向引物在95℃的条件下退火5min,得到MCS退火引物;所述多克隆位点MCS正向引物的核苷酸序列如SEQ ID NO:3所示;所述多克隆位点MCS反向引物的核苷酸序列如SEQ ID NO:4所示;
S6、将S5中得到的MCS退火引物T4连接至S4中得到的XhoI/SalI双酶切中间载体pGL-35S的回收产物中pGL-35S的XhoI/SalI位点之间,在温度为22℃的条件下连接反应1h,得到pGL-35S-MCS连接产物;将所述pGL-35S-MCS连接产物转化到大肠杆菌中,扩增繁殖,用质粒提取试剂盒提取后,得到中间载体pGL-35S-MCS;
S7、克隆Nos Ter序列:以pCambia1302质粒为模板,以特异性引物F2和特异性引物R2为引物进行PCR反应克隆Nos Ter序列,PCR扩增后,将PCR扩增产物用1.5%琼脂糖凝胶分离,切下251bp大小的条带,用DNA凝胶回收试剂盒回收PCR产物,得到Nos Ter序列PCR回收产物;PCR反应体系为:2×Pfu Master Mix 10μL,特异性引物F21μL、特异性引物R21μL、pCambia1302质粒1μL、灭菌超纯水补至20μL;PCR扩增的反应条件为:98℃预变性10min;98℃变性10s,55℃退火10s,68℃延伸20s,扩增40个循环;68℃延伸10min;所述特异性引物F2的核苷酸序列如SEQ ID NO:5所示;所述特异性引物R2核苷酸序列如SEQ ID NO:6所示;
S8、将S6中得到的中间载体pGL-35S-MCS用EcoRI/SalI双酶切,在温度为37℃的条件下酶切反应6h后,将酶切产物用1%琼脂糖凝胶分离后,切下3.72Kb大小的条带,用DNA凝胶回收试剂盒回收产物,得到EcoRI/SalI双酶切中间载体pGL-35S-MCS的回收产物;
S9、利用同源重组方法将S7中得到的Nos Ter序列PCR回收产物中的Nos Ter序列连接至S8中得到EcoRI/SalI双酶切中间载体pGL-35S-MCS的回收产物中的pGL-35S-MCS的EcoRI/SalI位点之间,在温度为50℃的条件下连接反应25min,得到pGL-35S-MCS-Nos连接产物,将所述pGL-35S-MCS-Nos连接产物转化到大肠杆菌中,扩增繁殖,用质粒提取试剂盒提取后,得到中间载体pGL-35S-MCS-Nos;
S10、将S9中得到的中间载体pGL-35S-MCS-Nos用BglII/BamHI双酶切,温度为37℃的条件下酶切反应6h后,将酶切产物用1%琼脂糖凝胶分离后,切下3.97Kb大小的条带,用DNA凝胶回收试剂盒回收产物,得到BglII/BamHI双酶切中间载体pGL-35S-MCS-Nos的回收产物;
S11、体外人工合成连接肽Linker正向引物和连接肽Linker反向引物,将所述连接肽Linker正向引物和所述连接肽Linker反向引物在温度为95℃的条件下退火5min,得到变性退火的连接肽Linker引物;所述连接肽Linker正向引物的核苷酸序列如SEQ ID NO:7所示;所述连接肽Linker反向引物的核苷酸序列如SEQ ID NO:8所示;
S12、将S11中得到的变性退火的连接肽Linker引物T4连接至S10中得到的BglII/BamHI双酶切中间载体pGL-35S-MCS-Nos的回收产物中pGL-35S-MCS-Nos的BglII/BamHI位点之间,在温度为22℃的条件下连接反应1h,得到pGL-35S-MCS-Linker-Nos连接产物;将所述pGL-35S-MCS连接产物转化到大肠杆菌中,扩增繁殖,用质粒提取试剂盒提取后,得到中间载体pGL-35S-MCS-Linker-Nos;
S13、将S12中得到的中间载体pGL-35S-MCS-Linker-Nos用BamHI/EcoRI双酶切,温度为37℃的条件下酶切反应6h后,将酶切产物用1%琼脂糖凝胶分离后,切下4.01Kb大小的条带,用DNA凝胶回收试剂盒回收产物,得到BamHI/EcoRI双酶切中间载体pGL-35S-MCS-Linker-Nos的回收产物;
S14、合成HA标签正向引物和HA标签反向引物,将所述HA标签正向引物和所述HA标签反向引物在温度为95℃的条件下退火5min,得到HA标签退火引物;所述HA标签正向引物的核苷酸序列如SEQ ID NO:9所示;所述HA标签反向引物的核苷酸序列如SEQ ID NO:10所示;
S15、将S14中得到的HA标签退火引物T4连接至S13中得到的BamHI/EcoRI双酶切中间载体pGL-35S-MCS-Linker-Nos的回收产物中pGL-35S-MCS-Linker-Nos的BamHI/EcoRI位点之间,在温度为22℃的条件下连接反应1h,得到pGL-35S-MCS-Linker-Nos连接产物;将所述pGL-35S-MCS连接产物转化到大肠杆菌中,扩增繁殖,用质粒提取试剂盒提取后,得到HA标签融合表达载体,命名为HA标签融合表达载体pProto-HA;所述HA标签融合表达载体pProto-HA的核苷酸如SEQ ID NO:11所示。
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