[发明专利]一种长链非编码RNA-LINC00842原位过表达的阶梯微调方法在审
申请号: | 202011052492.0 | 申请日: | 2020-09-29 |
公开(公告)号: | CN112111523A | 公开(公告)日: | 2020-12-22 |
发明(设计)人: | 陈颖;丁晓洁;郭威;杨震林;彭静;石剑林;明超 | 申请(专利权)人: | 云南省肿瘤医院(昆明医科大学第三附属医院) |
主分类号: | C12N15/867 | 分类号: | C12N15/867;C12N15/90;C12N15/67;C12N15/113 |
代理公司: | 昆明合盛知识产权代理事务所(普通合伙) 53210 | 代理人: | 龙燕 |
地址: | 650000 云*** | 国省代码: | 云南;53 |
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摘要: | |||
搜索关键词: | 一种 长链非 编码 rna linc00842 原位 表达 阶梯 微调 方法 | ||
1.一种长链非编码RNA-LINC00842原位过表达的阶梯微调方法,其特征在于:使用Lenti-CRISPR-dCas9系统从基因组DNA上目标基因的启动子区直接调节转录水平,无需引入外源构建的目的基因,不依赖任何药物诱导,具体为:利用LINC00842特异性的sgRNA定位dCas9到基因组DNA上LINC00842基因的启动子区,通过dCas9融合的VP64结合MS2-P65-HSF1,在定位点以不同程度募集转录起始复合体,实现梯度调节LINC00842基因的原位过表达;并且,慢病毒系统能够把过表达的所需元件LINC00842-sgRNA,dCAS-VP64,MS2-P65-HSF1整合到细胞的基因组DNA中,跟随细胞分裂复制,实现细胞株LINC00842的稳定过表达,最终得到一组稳定过表达不同幅度的LINC00842基因的细胞株系列。
2.根据权利要求1所述长链非编码RNA-LINC00842原位过表达的阶梯微调方法,其特征在于:具体包括以下步骤:
(1)sgRNA的设计:将转录起始位点及其上游900bp的碱基序列输入设计网站CRISPRdirect,物种选择为人类作为参考基因组,得到能够靶向该区域的所有sgRNA,从中筛选出特异性高的sgRNA序列用于载体构建;
LINC00842过表达sgRNA的序列:
LINC00842-sgRNA-1:TCCCTGTGCCCAGCTAACTG
LINC00842-sgRNA-2:TTGCTCCCCGGAAGACCCCT
LINC00842-sgRNA-3:CAGGTGTCTAAGTTCCCTCG
(2)使用BsmBI消化lenti sgRNA zeo backbone载体,胶回收纯化消化好的载体;对sgRNA退火,将消化好的载体与退火sgRNA进行连接反应;
(3)步骤(2)得到的连接产物直接转化大肠杆菌Stbl3感受态,转化后的菌液涂布于带氨苄抗性的LB培养平板上,静置培养过夜;
(4)从步骤(3)中的培养平板中挑取单克隆,接种于带氨苄抗性的液体培养基中,培养过夜,经过测序鉴定得到插入sgRNA的载体lenti sgRNA;
(5)步骤(4)得到的载体和包装载体一同使用包装慢病毒,然后利用包装好的慢病毒感染目的细胞。
3.根据权利要求2所述长链非编码RNA-LINC00842原位过表达的阶梯微调方法,其特征在于,所述慢病毒包装的具体过程为:
(1)提前24小时用多聚赖氨酸poly-L-lysine包被细胞培养皿并晾干,以促进包装细胞贴壁;
(2)将5-8×106数量级的包装细胞293T细胞悬于10ml完全培养基,铺到前期用多聚赖氨酸包被过的10cm2培养皿中;
(3)第二天当细胞融合度达到65%~80%时,弃去培养基用无菌PBS洗3遍,更换为含10%FBS的无抗生素培养基;
(4)将pVSVG包膜质粒,pSPAX包装质粒及目的基因质粒按比例混合于无抗生素无血清的opti-MEM培养基中;各质粒比例:pVSVG:1μg,pSPAX:3μg,lenti dCAS-VP64_Blast:1.5μg,lenti MS2-P65-HSF1_Hygro:1.5μg,lenti sgRNA(MS2):1.5μg,如果使用多个sgRNA组合,则各个sgRNA等比例混合;
(5)转染试剂Lipofectamine 2000,提前溶于等体积的无抗生素无血清的opti-MEM培养基中,随后与质粒混合体系充分混匀,室温静置反应20-30min,形成的DNA脂质体复合物均匀滴加到包装细胞培养皿中转染包装细胞;
(6)24小时后更换完全培养基,随后的48、72小时收获含慢病毒的培养上清病毒培养上清需分装后于-80℃保存。
4.根据权利要求2所述长链非编码RNA-LINC00842原位过表达的阶梯微调方法,其特征在于,所述用慢病毒载体感染目的细胞的具体过程为:
(1)慢病毒培养上清静置于冰上缓慢化冻,化冻后仍然置于冰上;
(2)含慢病毒的培养上清需与等体积的完全培养基混匀以补充营养物质,并添加基因转染增强剂polybrene至最终浓度为8ug/ml;
(3)目的细胞提前一天传代,当目的细胞达到55-75%融合度时弃去原培养液,加入混合好的慢病毒培养上清,让病毒感染目的细胞,培养过夜后首先用无菌PBS洗3遍,然后更换为完全培养基让目的细胞继续生长;
(4)感染72小时后收获细胞用于后续检测。
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