[发明专利]一种D-塔格糖3-差向异构酶固定化方法无效
申请号: | 201210040790.7 | 申请日: | 2012-02-22 |
公开(公告)号: | CN102533711A | 公开(公告)日: | 2012-07-04 |
发明(设计)人: | 江波;张涛;周林芳;沐万孟;缪铭 | 申请(专利权)人: | 江南大学 |
主分类号: | C12N11/08 | 分类号: | C12N11/08;C12R1/01 |
代理公司: | 无锡市大为专利商标事务所 32104 | 代理人: | 时旭丹;刘品超 |
地址: | 214122 江苏省无锡市滨湖区蠡湖*** | 国省代码: | 江苏;32 |
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摘要: | |||
搜索关键词: | 一种 塔格糖 差向异构 固定 方法 | ||
技术领域
本发明涉及一种D-塔格糖3-差向异构酶固定化方法,属生物工程技术领域。
背景技术
国际稀有糖协会(ISRS)对稀有糖的定义为“在自然界存在但含量极少的一类单糖及其衍生物”。D-阿洛酮糖(D-Psicose)是一种在自然界中较为稀有的天然己酮糖,属于稀有糖的一种。D-阿洛酮糖是D-果糖在C3位置的差向异构体,其甜味类似于蔗糖,甜度相当于果糖的70%,而热量值却只有0.007kcal/g,因此被称为零能量甜味剂,同时D-阿洛酮糖还具有改善肠道菌群、降低血糖、抗龋齿等功能特性。
D-塔格糖3-差向异构酶(D-tagatose 3-epimerase,以下简称DTE)家族蛋白可催化D-果糖异构为D-阿洛酮糖,是D-阿洛酮糖生物转化生产的关键酶。由于固定化酶在稳定性、重复使用性、经济成本、特殊工艺需要等方面较游离酶制剂有着显著的优越性,为了更有效地利用各种游离酶制剂,酶的固定化研究也一直受到研究者的重视。而关于DTE家族的固定化研究并不多,目前仅有日本香川大学(Kagawa University)Izumori团队和韩国世宗大学(Sejong University) Oh团队对DTE家族的固定化进行过报道。其中,Izumori团队先后对菊芋假单胞菌(Pseudomonas cichorii)野生菌来源和重组表达的DTE固定化,进行D-阿洛酮糖的生物转化法生产研究,优化后的工艺以Chitopearl beads为载体,通过离子交换结合方法固定重组DTE;Oh团队以离子交换树脂Duolite A568对根癌农杆菌(Agrobacterium tumefaciens) 来源重组表达的D-psicose 3-epimerase进行固定化,在硼酸盐存在下,D-阿洛酮糖的转化率达到65%。因此筛选新的树脂进行DTE家族的固定化成为食品从业者的新任务。
发明内容
本发明的目的在于提供一种D-塔格糖3-差向异构酶固定化方法。
本发明实现目的的技术方案是:
一种D-塔格糖3-差向异构酶固定化方法,包括下列步骤:
(1)获取酶液:称取R.sphaeroides SK01l发酵菌体,按质量体积比1:10的比例,加入缓冲液(50mmol/L Tris-HCl,50mmol/L NaCl,pH7.0-8.0)重悬菌体,利用超声波细胞破碎仪处理菌体后,在转速为6000~10000r/min、温度为0~5℃的条件下离心10~30min,收集上清液,此上清液即为D-塔格糖3-差向异构酶液;
(2)离子交换树脂处理:采用313、或D301-Ⅲ离子交换树脂,先用去离子水浸泡胀润、去杂,接着用质量浓度4%NaOH溶液浸泡12h后去离子水清洗至中性,再用质量浓度4%HCl溶液浸泡12h后去离子水清洗至中性,最后用质量浓度4%NaOH溶液浸泡12h后去离子水清洗至中性,用两倍树脂体积的去离子水浸泡,4℃下保存;
(3)固定化:采用先吸附后交联的方法,向处理好的离子交换树脂中加入D-塔格糖3-差向异构酶液,每g树脂加入D-塔格糖3-差向异构酶粗酶液1-6mL,并加入上述Tris-HCl缓冲液补足6mL,于pH 7.0~8.0、20~40℃吸附6~12h后取出;加入戊二醛溶液至终浓度为0.01%~0.2%,于2~8℃轻轻振荡交联1~5h,用去离子水洗涤以除去游离酶和未交联的戊二醛,即得到固定化的D-塔格糖3-差向异构酶。
固定化酶液的制备
球形红杆菌(Rhodobacter sphaeroides,R.sphaeroides),定名为R.sphaeroides SK01l,即CCTCC NO.M207185,通过发酵制备菌体(发酵具体条件见ZL200710191380.1);离心发酵液(10000 g,10 min,4℃)收集菌体,用Tris-HCl缓冲液(50 mM,pH 8.0)洗涤细胞2次即得静息细胞;细胞按质量体积比1:10加入Tris-HCl缓冲液(50 mM,pH 8.0)重悬后超声破碎7 min(300 W,工作1 s,停3 s,冰浴),离心(15000 g,20min,4℃)后对上清测定DTE活性,即为游离酶活。
游离DTE酶活力测定
取30 μL游离酶上清液,加50 μL 400 g/L D-果糖及120 μL Tris-HCl(50 mM,pH 8.0)缓冲液,50℃反应5 min,立即取出,加热煮沸10 min终止反应,冷却,12000 r/min离心15min后取上清,HPLC检测。
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