[发明专利]一种人羊膜间充质干细胞的高效分离、扩增方法在审
申请号: | 201811259326.0 | 申请日: | 2018-10-26 |
公开(公告)号: | CN109321517A | 公开(公告)日: | 2019-02-12 |
发明(设计)人: | 宋少锐;聂苏秦;朱艳丽;张博 | 申请(专利权)人: | 陕西九州细胞基因工程有限公司 |
主分类号: | C12N5/073 | 分类号: | C12N5/073;C12N5/0775 |
代理公司: | 北京汇信合知识产权代理有限公司 11335 | 代理人: | 吴甘棠 |
地址: | 710000 陕西省西安*** | 国省代码: | 陕西;61 |
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摘要: | |||
搜索关键词: | 间充质干细胞 羊膜 人羊膜间充质干细胞 羊膜上皮细胞 分离羊膜 高效分离 酶消化法 扩增 消化 传代培养 动物源性 分离过程 细胞过滤 研究应用 一步去除 粘液 干细胞 去除 | ||
1.一种人羊膜间充质干细胞的高效分离、扩增方法,其特征在于,包括:
一、试剂
二、两步酶消化法分离羊膜间充质干细胞
三、羊膜间充质干细胞传代培养。
2.根据权利要求1所述的一种人羊膜间充质干细胞的高效分离、扩增方法,其特征在于:其中,一、试剂包括:
1.胎盘保存液及清洗液;
2.胰蛋白酶储存液;
3.EDTA储存液;
4.胶原酶Ⅰ储存液;
5.DNaseⅠ储存液;
6.培养基及原代培养基。
3.根据权利要求1所述的一种人羊膜间充质干细胞的高效分离、扩增方法,其特征在于:其中,二、两步酶消化法分离羊膜间充质干细胞
1.胎盘运输;
2.羊膜分离组织分离;
3.羊膜上皮细胞分离;
4.羊膜间充质干细胞分离;
5.原代换液。
4.根据权利要求1所述的一种人羊膜间充质干细胞的高效分离、扩增方法,其特征在于:其中,三、观察原代细胞融合度60%以上即可传P1代,接种密度为8000~10000个/cm2;以后细胞融合度达80%以上即可传代;传代为完全培养基,无需添加双抗或庆大霉素。
5.根据权利要求2 1所述的一种人羊膜间充质干细胞的高效分离、扩增方法,其特征在于:其中,一、试剂,包括:
1.胎盘保存液及清洗液
注射用青霉素和硫酸链霉素用注射用生理盐水配置成每毫升1万单位的储存液,即为1%的双抗储存液;
500mL的注射用生理盐水加入5mL的双抗储存液,再加入2mL注射用硫酸庆大霉素,即配置成胎盘保存液或清洗液;
2.胰蛋白酶储存液
称取0.5g的胰蛋白酶,溶解于100mL生理盐水中,0.22μm滤膜过滤,即为0.5%(m/v)的胰蛋白酶储存液;
3.EDTA储存液
称取0.2gEDTA二钠,溶解于100mL生理盐水中,0.22μm滤膜过滤,即为0.2%(m/v)的EDTA储存液;
4.胶原酶Ⅰ储存液
称取1g胶原酶Ⅰ,溶解于100mL生理盐水中,0.22μm滤膜过滤,即为1%(m/v)的胶原酶Ⅰ储存液;
5.DNaseⅠ储存液
称取0.2g DNaseⅠ,溶解于100mL生理盐水中,0.22μm滤膜过滤,即为0.2%(m/v)的DNaseⅠ储存液;
6.培养基及原代培养基
培养基为Lonza通用型无血清培养基,按使用说明添加血清替代品及L-谷氨酰胺;原代培养基每50mL添加1%的双抗储存液500μL,添加200μL的注射用硫酸庆大霉素。
6.根据权利要求3所述的一种人羊膜间充质干细胞的高效分离、扩增方法,其特征在于:其中,二、两步酶消化法分离羊膜间充质干细胞,包括:
1.胎盘运输
孕妇分娩后的胎盘,置于含有保存液的胎盘储存盒中,2~8摄氏度及时运送回实验室;样本接收室检查运输温度,胎盘盒是否完整,避免出现污染,并对其进行编号;
2.羊膜分离组织分离
将胎盘置于不锈钢托盘中,用清洗液清洗1次;用手将围绕脐带周围胎盘子面的羊膜撕下,放入培养皿中,用手术剪将带有血渍的边缘剪掉,加入75%的医用酒精进行漂洗,再放入新的培养皿中,加入清洗液清洗,并用组织剪剪成1×1cm2大小的组织块,再用清洗液清洗一遍,转移至50mL离心管中,每管含羊膜组织10mL,1300rpm/min离心5min;
3.羊膜上皮细胞分离
离心结束后,弃上清,每管加入胰蛋白酶储存液3mL,EDTA储存液3mL,补充生理盐水至30mL,此时胰蛋白酶的浓度和EDTA的浓度分别为0.05%和0.02%;145rpm/min,37℃振荡消化15min;
消化结束后,加入适量生理盐水,1300rpm/min离心5min;弃上清;再重复上述胰蛋白酶和EDTA消化的步骤;
4.羊膜间充质干细胞分离
上述消化结束后,加入适量生理盐水,1300rpm/min离心5min;弃上清;将羊膜组织放入培养皿中,用清洗液清洗两次;
将羊膜组织放入新的50mL离心管中,每管约含组织10mL,并剪碎羊膜组织1-3mm;加入胶原酶Ⅰ2mL,DNAseⅠ2mL,补充生理盐水至20mL,此时胶原酶Ⅰ和DNAseⅠ的浓度分别为0.1%和0.02%;145rpm/min,37℃振荡消化60min;
消化结束后,加入适量生理盐水,1300rpm/min离心5min;弃上清及组织;每管加入10mL原代培养基接种于10cm的培养皿中培养;
5.原代换液
培养至第3天,进行第一次半换液,第6天根据实际情况进行半换或全换液,以后每隔3天全换液。
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