[发明专利]大胚龄神经干细胞的高-低密度贴壁细胞培养方法

说明书

技术领域

本发明涉及生物技术领域的一种胚胎神经干细胞培养方法，特别涉及一种大胚龄神经干细胞的高-低密度贴壁细胞培养方法。

背景技术

神经干细胞的发现是神经科学领域的重大突破，为神经发育和神经组织移植等研究领域开辟了广阔前景。神经干细胞是一种具有自我更新及广泛分化潜能的细胞，它处于分化的非终末状态，可通过对称或不对称分裂出新的干细胞或分化潜能逐渐变小的子细胞，最终产生中枢神经系统的三种主要细胞，即神经元细胞、星形胶质细胞和少突胶质细胞。一般认为神经干细胞主要存在于哺乳动物胎脑的纹状体、小脑半球、脑室区等，成年哺乳动物脑的侧脑室壁和海马等区。有关哺乳动物胚胎阶段和成年动物在特定脑区存在神经干细胞已不断得到证实，但大胚龄神经干细胞的分离和培养较为困难。传统的高密度悬浮细胞培养法克隆球形成和生长缓慢，存在高密度的抑制作用；低密度难以培养成功则可能是与细胞的密度依赖性和神经干细胞的绝对数量过少有关；中等密度悬浮细胞培养2周后可见克隆球形成，但有其它细胞吸附现象。

发明内容

为了解决胚胎神经干细胞较难培养的问题，本发明采用无血清培养和单细胞克隆技术13周人胚大脑皮层中分离和培养出具有自我更新和多分化潜能的神经干细胞，采用先高密度而后密度逐渐递减的高-低密度贴壁细胞培养法，在3周后可形成大量神经干细胞，该细胞具有连续克隆能力，可传达培养，表达神经巢蛋白抗原；分化后的细胞表达神经元细胞、胶质细胞和少突胶质细胞的特异性抗原。

具体的，本发明的大胚龄神经干细胞的高-低密度贴壁细胞培养方法包括以下步骤：皮层神经干细胞的分离和培养，高-低密度贴壁细胞培养法培养神经干细胞，神经干细胞的传代培养，神经干细胞的单细胞克隆，神经干细胞的分化培养以及免疫荧光法检测。

其中，所述皮层神经干细胞的分离和培养步骤包括：

取7周自然流产和13周水囊引产的人胚胎，无菌条件下分离出胚胎前脑和大脑皮层组织，制成单细胞悬液，加入无血清培养基中，台盼蓝染色计数活细胞，调整细胞浓度为1×10⁷/ml，分别种植于多聚赖氨酸包被的培养瓶中，37℃、体积浓度为5％CO₂条件下静置进行贴壁细胞培养；

所述高-低密度贴壁细胞培养法培养神经干细胞的步骤包括：应用高密度贴壁细胞培养5天后后吸出部分细胞改为低密度培养，培养2周时经多次换液去除悬浮细胞继续培养至4周时形成大量大小不等的克隆球；

所述的神经干细胞的传代培养步骤包括：待原代细胞培养出现大量悬浮克隆球后进行传代培养，在严格无菌条件下操作，在倒置显微镜下用自制玻璃微针将其中的大于200μm的大克隆球切成数块，继续培养，7～10天传代1次，方法同上述的高-低密度贴壁细胞培养法培养神经干细胞的步骤；

所述的神经干细胞的单细胞克隆步骤包括：在贴壁细胞培养中，当细胞密度降至1×10⁴/ml时，挑选散在出现、明显增大、具有强折光性的细胞，在培养瓶底面用记号笔分别标记，动态定点观察并照相记录；当单个细胞形成克隆球并逐渐增大即将悬浮脱离时，用玻璃微管逐个吸出克隆球进行分化试验；将原代细胞制成单细胞悬液，稀释至40个/ml，于96孔培养板中滴加稀释的细胞悬液，每孔100μl，选取仅有1个细胞的培养孔作标记；

所述神经干细胞的分化培养步骤包括：将以上获得的、来自单细胞的克隆球经胰酶消化后，种植于预先用多聚赖氨酸包被的小培养皿中，用DMEM/F12+5％Fcs+EGF+bFGF培养基和经过滤灭菌后的新鲜成人脑脊液中进行分化培养；

所述免疫荧光法检测步骤包括：将上述获得的克隆球种入包被的小培养皿中，用无血清培养基贴壁培养12小时后行荧光检测；经分化培养后的细胞分别于2、7、14和21天行荧光检测。

优选的，所述皮层神经干细胞的分离和培养步骤中的血清培养基为含B27(1∶50)和EGF(20ng/ml)、bFGF(20ng/ml)的DMEM/F12(1∶1)无血清培养基。

再优选的，所述的高-低密度贴壁细胞培养法培养神经干细胞的步骤中，所述高密度贴壁细胞培养的细胞密度为1×10⁷/ml，所述低密度贴壁细胞培养的细胞密度为1×10⁶/ml。

附图说明

通过下面结合附图的详细描述，本发明前述的和其他的目的、特征和优点将变得显而易见。其中：

图1所示为本发明的大胚龄神经干细胞的高-低密度贴壁细胞培养方法的步骤流程图。

具体实施方式