[发明专利]预防对虾白斑综合症病毒二价DNA疫苗的制作法及应用有效
申请号: | 201510575082.7 | 申请日: | 2015-09-10 |
公开(公告)号: | CN105194688B | 公开(公告)日: | 2019-01-01 |
发明(设计)人: | 张娜;马新华;龙阳;谢艳辉;袁俊杰;刘骁;杨劲;李红权;徐金龙;孙良娟 | 申请(专利权)人: | 湛江出入境检验检疫局检验检疫技术中心 |
主分类号: | A61K48/00 | 分类号: | A61K48/00;A61K39/295;A23K20/00;A23K50/80;A61P31/20 |
代理公司: | 北京市广友专利事务所有限责任公司 11237 | 代理人: | 张仲波 |
地址: | 524022 *** | 国省代码: | 广东;44 |
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摘要: | 本发明预防对虾白斑综合症病毒二价DNA疫苗的制作法及应用在引物设计时进行在上、下游引物两端分别加上两个酶切位点,使克隆得到的抗原基因VP19和VP28带有双酶切位点;在进行双酶切时,使目的基因获得粘性末端,再用DNA连接酶将抗原基因VP19和VP28串联克隆至原核表达载体,用以进行原核表达载体;在构建二价DNA疫苗时,需要进行VP19基因改造,即通过引物设计,去除VP19基因的终止密码子;由于在进行引物设计时,VP19基因下游的酶切位点和VP28上游的酶切位点是同一个,所以通过酶切技术,可以使VP19基因和VP28基因串联克隆。 | ||
搜索关键词: | 预防 对虾 白斑 综合症 病毒 二价 dna 疫苗 制作 应用 | ||
【主权项】:
1.一种预防对虾白斑综合症病毒二价DNA疫苗的制作法,其特征在于,步骤如下:步骤1:设计白斑病毒VP19和VP28基因扩增引物,具体如下:A.依据VP19基因序列,应用Primer Premier 5软件合成一对引物:(1‑1)上游引物:5‑GGATCCATGGCCACCACGACTAACAC‑3,其中划线处的GGATCC为BamHⅠ;(1‑2)下游引物:5‑GAATTCTTACTGCCTCCTCTTGGGGT‑3,其中划线处的GAATTC为EcoRⅠ;B.依据VP28基因序列,应用Primer Premier 5软件合成一对引物:(2‑1)上游引物:5‑AGAGAATTCATGGATCTTTCTTTCAC‑3,其中划线处的GAATTC为EcoRⅠ;(2‑2)下游引物:5‑CACAAGCTTTTACTCGGTCTCAGTGC‑3,其中划线处的AAGCTT为XhoⅠ;步骤2:白斑病毒总DNA的提取,具体如下:使用DNA提取试剂盒,对病料虾组织的DNA进行提取;步骤3:白斑病毒VP19的PCR扩增,具体如下:反应体系的体积份数为25,在反应管中依次加入10×buffer 2.5,其中2.5为体积份数,(1‑1)的上游引物为40pmol,体积份数为1.5,(1‑2)的下游引物为40pmol,体积份数为1.5,dNTP各10mM,体积份数为2,Taq酶的体积份数为0.5,然后加水至总体积到体积份数为25;充分混匀,将反应管置于PCR仪器中,在94℃的条件下进行4min的预变性;在94℃条件下进行变性1min,并在55℃的条件下退火1min;在72℃的条件下延伸2min,随后进行32次循环,在72℃条件下延伸10min;在本步骤中进行退火的装置为中空的罩体(101),该中空的罩体(101)的上端安装着反应物入口通道(111)与反应物出口通道(112),于中空的罩体(101)中另外带有同外界相导通的引导杆(102),所述的引导杆(102)两端带有贯通槽,而所述的引导杆(102)插进中空的罩体(101)中,所述的引导杆(102)的数量为两个以上,均竖直插进中空的罩体(101)中,而且插进中空的罩体(101)中的竖直方向的高度不相等,于中空的罩体(101)的下端带有杂质出口,在进行退火期间,所述的反应物出口通道(112)同吸气装置经由两端带有贯通槽的杆件相连,这样将反应管中的反应物经过反应物入口通道(111)送进中空的罩体(101)后,于吸气装置生成的反向力下,外界气流由引导杆(102)亦导进到中空的罩体(101)中,由此进入的反应物于中空的罩体(101)中同外界气流搅合在一起,凭借若干所述的引导杆(102),因为插进中空的罩体(101)中的竖直方向的高度不相等,防止导进中空的罩体(101)的反应物阻塞引导杆(102),外界气流到达中空的罩体(101)中的各种高度,各自对进入的反应物实现了层进式的搅合;这样被带走热量的反应物在反向力下导进吸气装置中,最后经过吸气装置返回反应管;步骤4:白斑病毒VP28的PCR扩增,具体如下:反应体系的体积份数为25,在反应管中依次加入10×buffer 2.5,其中2.5为体积份数,(2‑1)的上游引物为40pmol,体积份数为1.5,(2‑2)的下游引物为40pmol,体积份数为1.5,dNTP各10mM,体积份数为2,DNA模板的体积份数6,Taq酶的体积份数为0.5,然后加水至总体积到体积份数为25,充分混匀,将反应管置于PCR仪器中,在94℃条件下进行4min预变性;在94℃条件下变性1min,在55℃条件下退火1min;在72℃条件下延伸2min,随后进行32次循环,在72℃条件下延伸10min;步骤5:白斑病毒VP19基因和VP28基因片段的克隆,具体如下:A.PCR产物的回收将体积份数为10的VP19基因和VP28基因的PCR产物经琼脂糖电泳检测,在紫外灯下切下特异性目的条带,用胶回收试剂盒进行回收和纯化;B.回收产物与T载体的连接和转化将纯化的VP19基因和VP28基因PCR产物分别与pMD18‑T载体连接并转化受体菌E.coli DH5a,涂布于含氨苄青霉素100μg/mL的LB固体培养基平板上,于37℃的温箱中倒置培养16h;C.重组质粒的酶切鉴定随机挑取LB平板上的白色单菌落,接种于4mL含氨苄青霉素100μg/mL的LB液体培养基中,37℃振荡培养8h,用质粒抽提试剂盒进行常规小量质粒的提取,对所提质粒pMD18‑T‑VP19基因用BamHⅠ、EcoRⅠ进行酶切鉴定,对质粒pMD18‑T‑VP28基因EcoR、XhoⅠ进行酶切鉴定,以确定质粒构建成功;步骤6:VP19基因和VP28基因测序与序列分析,具体如下:经限制性内切酶鉴定均为阳性‑‑的克隆,进行测序,测序结果经DNA star分子生物学软件分析,分别与GenBank VP19基因和VP28基因的序列进行核苷酸序列同源性分析;步骤7:VP19和VP28基因原核表达重组质粒的构建,具体如下:分别用BamHⅠ、EcoRⅠ双酶切克隆质粒载体pMD18‑T‑VP19和原核载体pET‑28a(+),EcoRⅠ、XhoⅠ双酶切克隆质粒载体pMD18‑T‑VP28和原核载体pET‑28a(+),分别回收目的基因VP19和pET‑28a(+)大片段,目的基因VP28和pET‑28a(+)大片段构建成pET‑28a(+)‑VP19和pET‑28a(+)‑VP28重组表达质粒,具体质粒的提取、酶切回收、连接、转化、鉴定步骤同步骤5,挑选单克隆菌落,于恒温摇床上37℃振荡培养,提取质粒,并用BamHⅠ、EcoRⅠ和EcoRⅠ、XhoⅠ双酶切鉴定,以确定质粒构建成功;步骤8:重组表达质粒pET‑28a(+)‑VP19和pET‑28a(+)‑VP28在大肠杆菌中的表达,具体如下:挑选经过鉴定为阳性的菌落接种于含卡钠青霉素100μg/ml的LB液体培养基中,在37℃下振荡培养过夜,次日按照1:100比例转接于新的LB培养基中,在37℃下振荡培养至对数生长期,测定OD600在0.5时,开始用1mM IPTG进行诱导,分别收集0h、1h、2h、3h、4h、5h、6h的菌液各1mL,表达产物用SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳SDS‑PAGE鉴定,结果表明包括VP19和VP28成熟蛋白基因片段表达蛋白大小分别为13.6KD和22KD,与理论推算值基本一致;步骤9:DNA疫苗重组质粒pVAX1.0‑VP19和pVAX1.0‑VP28的构建,具体如下:分别用BamHⅠ、EcoRⅠ双酶切克隆质粒载体pMD‑18‑T‑VP19和疫苗载体pVAX1.0,EcoRⅠ、XhoⅠ双酶切克隆质粒载体pMD18‑T‑VP28和疫苗载体pVAX1.0,分别回收目的基因VP19和pVAX1.0大片段,目的基因VP28和pVAX1.0大片段构建成pVAX1.0‑VP19和pVAX1.0‑VP28重组表达质粒,pVAX1.0‑VP19质粒用BamHⅠ、EcoRⅠ双酶切鉴定,还有pVAX1.0‑VP28质粒EcoRⅠ、XhoⅠ双酶切鉴定,以确定质粒构建成功;步骤10:多价DNA疫苗重组质粒pVAX1.0‑VP19‑VP28的构建,具体如下:A.依据克隆得到的WSSV vp19基因序列,重新设计一对引物,上游含有BamHⅠ酶切位点,下游含有EcoRⅠ酶切位点,去除终止密码子,所得如下:P1:5‑GGATCCATGGCCACCACGACTAACAC‑3,其中划线处的GGATCCAT为BamHⅠ;P2:5‑GAATTCCTGCCTCCTCTTGGGGT‑3,其中划线处的GAATTCC为EcoRⅠ;然后以pMD18‑T‑VP19质粒为模板,P1,P2为特异引物,PCR法扩增出VP19‑2基因,回收纯化,然后将它克隆到pMD18‑T克隆载体,记为pMD18‑T‑VP192;B.多价DNA疫苗重组质粒pVAX1.0‑VP19‑VP28的构建分别用BamHⅠ和EcoRⅠ双酶切pMD18‑T‑VP192质粒和pVAX1.0空质粒,回收PVAX 1.0空质粒大片段和VP192小片段,连接构建pVAX1.0‑VP192质粒,然后用EcoRⅠ和XhoⅠ双酶切pVAX1.0‑VP192质粒和pMD18‑T‑VP28质粒,连接构建pVAX1.0‑VP19‑VP28质粒,以确定质粒构建成功;接着进行对DNA疫苗在虾体内表达情况的检测,具体如下:A.口服饲料的制备:取pVAX1.0‑VP19、pVAX1.0‑VP28、pVAX1.0‑VP19‑VP28保存的菌种分别进行培养得到菌液,将得到的菌液3L 6000g离心10min,得到菌体,称量菌体重量,将菌体收集到玻璃瓶中,放入超低温冰箱中,待其完全冻结后取出,室温使其融化,反复3次,以反复冻融法灭活菌体;将灭活菌体以1:4的比例拌入饲料中,搅拌均匀,于通风处阴干饲料,每天小心搅拌避免饲料受潮霉变,待饲料干后,为尽量避免包裹于饲料表面的灭活菌很快融入水中,将饲料包裹蛋清,搅拌均匀,于通风处阴干饲料,每天小心搅拌避免饲料受潮霉变,待饲料干后,将制得的饲料以2g/包的量分装好,备用;B.DNA疫苗在虾体内RT‑PCR检测:试验共分为4组,每组10尾虾,分别口服pVAX1.0‑VP19疫苗、pVAX1.0‑VP28疫苗、pVAX1.0‑VP19‑VP28疫苗和空白对照组,分别在免疫10d和20d取3尾虾的虾鳃,用RT‑PCR法分别扩增VP28基因和VP19基因,结果表明,构建的pVAX1.0‑VP19、pVAX1.0‑VP28、pVAX1.0‑VP19‑VP28三组重组质粒分别免疫对虾,在免疫10d和20d取虾鳃,用RT‑PCR法分别扩增VP28基因和VP19基因,在各实验组中,分别扩增出与VP28基因和VP19基因大小相吻合的条带,非免疫组未能检测到,结果表明VP19、VP28基因重组质粒和与两个基因融合的重组质粒均能在虾鳃中转录出mRNA。
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