[发明专利]小鼠卵巢表面上皮细胞的分离、培养、鉴定技术

说明书

技术领域

本发明涉及生命科学领域，具体的涉及一种小鼠卵巢表面上皮细胞的分离、培养、鉴定技术。

背景技术

卵巢癌是妇科三大肿瘤之一，由于目前尚无较好的检测指标，其早期诊断率低，致死率高，预后差。大约80%-90%的卵巢癌起源于卵巢表面上皮细胞。为了更深入了解上皮细胞性卵巢癌的发生发展机制，需要建立一个小鼠卵巢表面上皮细胞的体外研究模型。

发明内容

本发明提供了一种小鼠卵巢表面上皮细胞的分离、培养、鉴定技术，更深入了解上皮细胞性卵巢癌的发生发展机制，提供一种较好的卵巢癌检测指标。

样处理厂的告知系统为实现上述技术目的，达到上述技术效果，本发明通过以下技术方案实现：

一种小鼠卵巢表面上皮细胞的分离、培养、鉴定技术，包括以下步骤：

a．小鼠卵巢表面上皮细胞的分离与培养

步骤1：在超净台下，取4只6 - 8周龄未生育过的健康雌性C57BL/6小鼠的卵巢，放置在含400 IU/ml青霉素、链霉素的PBS（1000 ml双蒸水, NaCl 8.0 g, KCl 0.2 g , Na₂HPO₄·12H₂O 3.58 g , KH₂PO₄ 0.2 g , PH为7.4）缓冲液中；

步骤2：用无菌的PBS溶液轻轻冲洗卵巢3次，剥离卵巢被膜、脂肪组织及残留的输卵管组织，将剥离后的卵巢放置在装有胰酶（0.25 % 胰酶+EDTA, 27℃预热）的1.5 ml EP管中，在37℃含有5%二氧化碳的培养箱中消化，为使卵巢表面充分接触胰酶，应尽量使卵巢分离开来；

步骤3：30 min后，从培养箱中取出1.5 ml EP管，上下摇动10次左右，取出卵巢并将其转移到另一个装有胰酶（0.25 %胰酶+EDTA）的1.5 ml EP管中进行第二次消化。在原1.5 ml EP管中加入完全培养基终止消化，将包含有上皮细胞的液体离心（1000r/min,5 min），弃上层液，加入1 ml完全培养基缓慢吹打6 - 10次，收集含小鼠卵巢表面上皮细胞的悬液，移入35 mm培养皿，在37℃含有5%二氧化碳的培养箱中孵育；第二次消化的步骤与第一次相同；

步骤4：实验的第2 d应尽量避免移动培养皿，利于细胞贴壁生长，同时能够维持细胞周围的微环境稳定。在实验的第3 d根据细胞生长情况换液。早期传代细胞培养间隔8 - 10 d按1：2比例传代，晚期传代细胞培养间隔为3 - 5 d按1：5传代；

b．免疫荧光法定性定量鉴定小鼠卵巢表面上皮细胞纯度

步骤1：在无菌超净台中将第2代的 MOSEC用胰酶（0.25 % 胰酶+EDTA）消化，接种到24孔板中的爬片上，在37℃含有5 % 二氧化碳的培养箱中孵育，待细胞密度达到80 % 时，弃培养基，PBS漂洗3次；

步骤2：用4 % 的多聚甲醛溶液固定细胞30 min后，用1 % TritonX-100穿透10 min再用5%封闭液室温封闭30 min；

步骤3：加入1：500 稀释的一抗pan anti-cytokeratin，在4℃湿盒中过夜，用PBS漂洗3×3 min；

步骤4：加入1：1000稀释的二抗山羊抗小鼠 IgG，37℃避光反应1.5 h ，再用PBS漂洗3×3 min；

步骤5： 加入10μ g/ml稀释的DAPI，染色15 min,用PBS漂洗3×3 min，用抗淬灭剂封固，在共聚焦激光扫描显微镜下观察，在100 倍视野下每孔随机取20个视野检测，计数每个视野内的阳性细胞数( N1) 和细胞总数(N) 比值，计算细胞阳性率，阳性率= N1/ N×100%。

进一步的，所述完全培养基是包含5 % FBS、1 %  Penicillin-Streptomycin、10 ng/ml mEGF、10 %  Insulin-Transferrin-selenium-A和0.5 mg/ml hydrocortisone的DMEM/F12培养液。

c．免疫组织化学法检测小鼠卵巢表面上皮细胞分离效果

步骤1：同一批次的未处理过的完整小鼠卵巢和用胰酶消化过的小鼠卵巢分别放到4 % 甲醛中4℃过夜；

步骤2：用石蜡包被卵巢后切成10 μm组织切片；

步骤3：将脱石蜡的卵巢标本放到0.01 M柠檬酸钠缓冲液中煮沸10 min，PBS漂洗；