[发明专利]一种浙贝母病毒的组培鳞茎保存方法无效

专利信息
申请号: 200810059303.5 申请日: 2008-01-16
公开(公告)号: CN101215550A 公开(公告)日: 2008-07-09
发明(设计)人: 陈剑平;徐刚;汪一婷;吕永平;牟豪杰;郑红英;林林;程晔 申请(专利权)人: 浙江省农业科学院
主分类号: C12N7/00 分类号: C12N7/00;C12Q1/70;C12Q1/68
代理公司: 杭州九洲专利事务所有限公司 代理人: 陈继亮
地址: 310021*** 国省代码: 浙江;33
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摘要: 发明涉及一种浙贝母病毒的组培鳞茎保存方法,属植物病毒保存技术领域,包括如下步骤:病毒病原种类的鉴定、培养基的配制、脱毒组培鳞茎的培养、病毒ELISA检测、病毒摩擦接种、病毒的鳞茎保存。本发明的优点是:利用浙贝母脱毒组培鳞茎感染提纯病毒,再进行浙贝母组培鳞茎保存病毒,克服了传统保存的不足,可防止病毒混杂与丢失,且易提取制备高滴度病毒,为抗病毒育种和病毒检测抗血清制备中提供高纯度的病毒,降低了保存成本并提高了保存效果,并便于携带交流。
搜索关键词: 一种 浙贝母 病毒 鳞茎 保存 方法
【主权项】:
1.一种浙贝母病毒的组培鳞茎保存方法,其特征在于:该方法按以下步骤进行:1)、浙贝母病毒病原种类的鉴定:2)、培养基的配制,包括基本培养基和组培各阶段培养基的各组分与每升所含重量为:(1)基本培养基:选用MS培养基,蔗糖或白糖20~40g/L,琼脂7~9g/L,pH5.6~5.8;(2)子鳞茎诱导培养基:MS+2,4-D 0.5~1.5mg/L和ZT 1~3mg/L+蔗糖或白糖30g/L;(3)子鳞茎增殖培养基:MS+BA 1~3mg/L和NAA 1~3mg/L+蔗糖或白糖40g/L+盐酸硫胺素(VB1)4mg/L;(4)壮苗培养基:MS+BA 0.5~1.5mg/L和NAA 0.5~1.5mg/L+蔗糖或白糖40g/L+盐酸硫胺素(VB1)4mg/L;(5)子鳞茎保存培养基:1/2MS+BA 0.05~0.1mg/L和NAA 0.05~0.1mg/L+蔗糖或白糖20g/L+盐酸硫胺素(VB1)4mg/L;(6)鳞茎生长培养基:MS+BA 0.1~1mg/L和NAA 0.1~1mg/L+蔗糖或白糖40g/L+盐酸硫胺素(VB1)4mg/L+水解酪蛋白(CH)500mg/L;(7)生根培养基:1/2MS+NAA 0.1~1mg/L+蔗糖或白糖20g/L+盐酸硫胺素(VB1)4mg/L;3)、浙贝母脱毒组培鳞茎的培养,按如下步骤进行:(1)外植体的选取与灭菌:取浙贝母新生长的鳞茎或嫩茎或花梗为外植体,经灭菌处理,作为脱毒组培用的外植体;(2)子鳞茎诱导培养:将步骤(1)灭菌处理后的鳞茎或嫩茎或花梗在无菌条件下,切成0.3~0.6cm的切段,接种在子鳞茎诱导培养基上,经1~2个月后,从鳞茎或嫩茎或花梗外植体上诱导形成子鳞茎;(3)子鳞茎增殖培养:将步骤(2)诱导形成的子鳞茎转接到子鳞茎增殖培养基上,培养30~45天增殖出子鳞茎;(4)壮苗培养:将步骤(3)增殖的子鳞茎经4℃低温处理1周,然后培养30~45天后长成壮苗;(5)热处理:将步骤(4)长成的壮苗经35℃、2~4周处理后,供茎尖培养用;(6)茎尖培养:将步骤(5)热处理过的组培苗在40倍的双筒解剖镜下,摘出0.2~0.5mm大小的带1~2个叶原基的茎尖作为脱毒培养的外植体;(7)子鳞茎诱导培养:将步骤(6)摘出的茎尖接种在子鳞茎诱导培养基上,经1~2个月后,诱导形成子鳞茎;(8)子鳞茎增殖培养:将步骤(7)诱导形成的子鳞茎转接到子鳞茎增殖培养基上,培养30~45天增殖出子鳞茎;每隔30~45天,将步骤10)增殖的子鳞茎转接到子鳞茎增殖培养基上,培养30~45天再增殖出子鳞茎;(9)子鳞茎生长培养:将步骤(8)增殖的子鳞茎转接到子鳞茎生长培养基上,培养30~45天使鳞茎长大到0.5~1cm;(10)生根培养:将步骤(9)长大的子鳞茎接种在生根培养基中进行生根培养,20~30天后,子鳞茎上部长出叶片,子鳞茎基部长出数根根系;(11)移栽:当步骤(10)的生根子鳞茎苗高生长至3~5cm以上、根长出5根以上时,移栽基质培养1~2个月至成苗;(12)定植:将步骤(11)的移栽苗定植在温室内的盆钵中,培养6~10个月至植株:4)、病毒ELISA检测:应用病毒外壳蛋白基因扩增、克隆和原核表达,以获得大量相关病毒外壳蛋白,用于小鼠或家兔免疫,制备病毒特异性抗血清,供病毒ELISA检测之用;5)、病毒摩擦接种:按照裘维蕃的方法,将步骤1)分离纯化的病毒通过汁液摩擦接种到步骤4)检测为无病毒的浙贝母植株上;6)、病毒的鳞茎保存:将步骤5)接种上病毒的浙贝母进行组培鳞茎的培养和保存,按如下步骤进行:(1)外植体的选取与灭菌:取浙贝母新生长的鳞茎或嫩茎或花梗为外植体,经灭菌处理,作为组培用的外植体;(2)子鳞茎诱导培养:将步骤(1)灭菌处理后的鳞茎或嫩茎或花梗在无菌条件下,切成0.3~0.6cm的切段,接种在子鳞茎诱导培养基上,经1~2个月后,从鳞茎或嫩茎或花梗外植体上诱导形成子鳞茎;(3)子鳞茎增殖培养:将步骤(2)诱导形成的子鳞茎转接到子鳞茎增殖培养基上,培养30~45天增殖出子鳞茎;每隔30~45天,将增殖的子鳞茎转接到子鳞茎增殖培养基上,培养30~45天再增殖出子鳞茎;(4)子鳞茎保存:将步骤(3)增殖的子鳞茎转接到子鳞茎保存培养基上,保存培养10~12个月,子鳞茎生长缓慢,鳞茎长大0.3~0.6cm;每隔10~12个月,将保存的子鳞茎转接到新鲜的子鳞茎保存培养基上,继续进行保存培养;(5)子鳞茎生长培养:将步骤(4)保存的子鳞茎转接到子鳞茎生长培养基上,培养30~45天使鳞茎长大到0.5~1cm;(6)生根培养:将步骤(5)长大的子鳞茎接种在生根培养基中进行生根培养,20~30天后,子鳞茎上部长出叶片,子鳞茎基部长出数根根系;(7)移栽:当步骤(6)的生根子鳞茎苗高生长至3~5cm以上、根长出5根以上时,移栽基质培养1~2个月至成苗;(8)定植:将步骤(7)的移栽苗定植在温室内的盆钵中,培养6~10个月至植株。
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