[发明专利]一种山羊的抗衰老基因的合成、转染及检测方法在审
申请号: | 201510014918.6 | 申请日: | 2015-01-09 |
公开(公告)号: | CN104745627A | 公开(公告)日: | 2015-07-01 |
发明(设计)人: | 孙晓凤;李兰;程顺峰;沈伟 | 申请(专利权)人: | 青岛农业大学 |
主分类号: | C12N15/85 | 分类号: | C12N15/85;C12N15/53;C12N5/10 |
代理公司: | 无 | 代理人: | 无 |
地址: | 266109 山东省青*** | 国省代码: | 山东;37 |
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摘要: | 本发明公开了一种山羊的抗衰老基因的合成、转染及检测方法。本发明通过转基因技术,获得了带有n-3 FatI基因的转基因波尔山羊成纤维细胞,脂肪酸测定分析表明:该转基因细胞能将n-6多不饱和脂肪酸转化为n-3多不饱和脂肪酸。通过对该转基因细胞和转pEGFP-N1细胞进行细胞增殖、细胞凋亡和细胞衰老方面的比较分析,得出结论:FatI基因在该山羊转基因细胞中具有抗衰老作用。本研究为制备带有n-3 FatI基因的畜禽动物,获得自身合成n-3多不饱和脂肪酸的畜禽,进而高效、低廉地生产出含有n-3多不饱和脂肪酸的蛋奶肉制品提供了不可缺少的条件。 | ||
搜索关键词: | 一种 山羊 衰老 基因 合成 转染 检测 方法 | ||
【主权项】:
一种山羊的抗衰老基因的合成、转染及检测方法,其特征在于,包括如下步骤:S1、根据GenBank中的的线虫序列,采用化学合成法合成针对哺乳动物进行过密码子优化的FatI基因的编码区序列,并在起始密码子ATG之前加上了一段序列GTTGCGGCCGCCACC,其中包含了有利于基因表达的Kozak序列,并在其上下游分别引入了HindIII,KpnI限制性内切酶的酶切位点及相应的保护碱基;S2、将步骤S1合成的序列连接到克隆载体pUC57载体中,获得重组质粒pUC57‑FatI,将pUC57‑FatI和真核表达载体pCDNA3.1(+)用限制性内切酶HindIII,KpnI进行双酶切,胶回收相应的片段,将FatI基因连接入将连接入真核表达载体pCDNA3.1(+)中获得重组质粒pCDNA3.1(+)‑FatI;将经过质粒抽提获得的pCDNA3.1(+)‑FatI用SalI酶切后胶回收相对大的片段,以备转染;S3、取怀孕35天的波尔山羊,手术迅速取出山羊胎儿,用含双抗的PBS冲洗2遍,在超净工作台上将山羊胎儿去头去尾去内脏,剩下的部分用剪刀剪碎后加胰酶消化30min,用移液器吹打至大部分为单个细胞,将所得的细胞置于添加有10%胎牛血清,100U/ml青霉素和100mg/L硫酸链霉素的DMEM/F12培养基上,5%CO2培养箱中37℃培养;S4、当步骤S3中细胞汇合度达到85%左右时,用胰酶消化收集步骤S3所得的细胞,并用PBS冲洗2次,以彻底去掉胰酶,用无抗生素的细胞培养基稀释细胞,加入经过酶切回收的带有FatI基因的DNA,混合后冰浴10min,用电穿孔仪ECM830进行电转染;取出电击杯,冰浴10min后,将细胞转移至培养皿中在37℃,5%CO2环境的培养箱中培养;细胞培养至24小时后加G418,进行抗性筛选;S5、经过11天的培养筛选,培养皿中开始出现阳性克隆,将阳性克隆挑出后培养于96孔板中,然后逐级放大到24孔板和6孔板中,得到促使细胞内n‑6脂肪酸向n‑3脂肪酸转化的稳定表达FatI基因序列的细胞株;S6、基因组PCR初步检测阳性细胞:对步骤S5培养过程中留在原培养板上的细胞继续培养,待细胞铺满培养板时用胰酶消化收集细胞,用基因组抽提试剂盒提取细胞的基因组,PCR初步检测外源基因是否进入细胞;S7、FatI的mRNA水平表达检测:基因组PCR检测为阳性的一个细胞株,利用EASYspinRNA快速抽提试剂盒进行RNA的提取,反转录后进行定量PCR检测细胞株中FatI的mRNA表达水平;S8、脂肪酸组成分析:转Fat I基因及pEGFP‑N1质粒的波尔山羊成纤维细胞克隆放大到10cm细胞培养皿上后,添加10μmol/L的亚油酸和花生四烯酸进行培养,细胞完全长满后,用胰酶消化收集细胞;细胞用去离子水洗涤,加入2.5%H2SO4/甲醇溶液1mL,80℃加热90min,冷却到室温后加入1.5mL 0.9%NaCl溶液和1mL正己烷,震动、低速离心将脂肪酸提取到有机相;吸取上层清液经液氮吹干后用于气相色谱(GC_MS)分析;S9、进行BrdU标记和检测:在细胞培养过程中加入10mM BrdU标记12小时后,用70%的乙醇固定,然后用PBS将残余的乙醇清洗干净,加入鼠源抗BrdU的抗体作为一抗,二抗用Cy3标记的抗鼠的IGg,奥林巴斯BX51荧光显微镜下拍照;S10、TUNEL法检测细胞凋亡:在4℃条件下,用4%的多聚甲醛固定细胞25分钟后,加入荧光素标记的dUTP和末端转移酶37℃孵育一小时,然后分别用柠檬酸钠和PBS淋洗细胞,Hoechst 333258用来特异于细胞核着色,在荧光显微镜下能发绿色荧光细胞即为凋亡细胞,随机选取三板,每板上随机选择一个区域的至少1000个细胞进行计数,用凋亡细胞数除以细胞总数即为细胞凋亡率;S11、细胞衰老检测:将细胞培养于24孔板,用PBS淋洗后,加入β‑半乳糖苷酶试剂,室温孵育15分钟,PBS淋洗后加入1mL染色试剂,37℃孵育过夜,显微镜下拍照;S12、进行数据统计。
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